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免疫组化(IHC)|超详细的protocol

日期:2024-08-08 返回

实验步骤

(1)摊片:切片放65℃摊片机40min-1h。

(2)脱蜡水化:二甲苯Ⅰ(10min)→二甲苯Ⅱ(10min)→100 % 乙醇Ⅰ(10 min)→100 % 乙醇Ⅱ(10 min)→95 % 乙醇(5 min)→85 % 乙醇(5 min)→ 75 % 乙醇(5 min)

(3)洗片:双蒸水洗5min×3次,PBS洗5 min×3次。

(4)阻断:3% 过氧化氢37℃ 阻断20min,PBST 5 min×3次。

(5)高温高压抗原修复:将盛有枸橼酸盐/柠檬酸盐抗原修复缓冲液的染色缸置于高压锅中加热至沸腾,将切片放入染色缸内,保证抗原修复缓冲液没过病理组织,待高压锅喷气时开始计时2 min。修复完成后,待修复液自然冷却至室温后取出组织切片,PBST洗片5 min×3次。

(6)血清封闭:组织切片滴加一滴正常山羊血清封闭液,37℃ 孵育30min。

(7)孵育一抗:组织切片上滴加目的一抗,置于4℃12-16h。

(8)组织切片在室温复温30min,PBST洗片5 min×3次。

(9)在组织切片滴加生物素标记的山羊抗兔IgG二抗,在37℃孵育30 min,PBST 洗片5 min×3次。

(10)组织切片滴加链霉素抗生物素-过氧化物酶溶液,37℃ 孵育30 min,PBST洗片5 min×3次。

(11)DAB显色:避光配置DAB显色剂(稀释液:底物:色原 =20:1:1 ), 现用现配。组织切片滴加DAB 显色剂,放置显微镜下观察,显色完毕后立即将组织切片放入双蒸水中终止显色。

(12)苏木素核染:组织切片滴加苏木素染细胞核1 min,充分水洗后在镜下观察染色情况,颜色浅则继续复染,如颜色过深则置于1% 盐酸酒精中分化,最后使用自来水冲洗使细胞核颜色反至天蓝色。

(13)常规脱水、透明:75 % 乙醇(5 min)→ 85 % 乙醇(5 min)→95 % 乙醇(5 min)→100 % 乙醇Ⅱ(10 min)→100 % 乙醇Ⅰ(10min)→二甲苯Ⅱ(10 min)→二甲苯Ⅰ(10 min)

(14)中性树胶封片、自然风干、标注,正置显微镜下观察并拍照(放大倍数:×200 )



文章出自:免疫组化(IHC)   想了解更多请关注:http://www.vv-gene.com/

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